Serine/Threonine post-translationele modificaties

Serine en Threonine Post-Translationele Modificaties (PTM's) verwijzen naar de chemische modificaties die eiwitten ondergaan na synthese, waarbij fosforylatie en glycosylatie de meest voorkomende vormen van modificatie zijn. De PTM's op serine- en threonineresiduen omvatten voornamelijk fosforylatie en O-glycosylatie. Na modificatie kunnen deze aminozuurresiduen de activiteit, stabiliteit en interactiemogelijkheden van het eiwit aanzienlijk veranderen, waardoor ze een cruciale rol spelen bij celsignaleringstransductie, metabolische regulatie en andere belangrijke biologische processen. Diepgaande studies van deze wijzigingen helpen de moleculaire mechanismen achter levensactiviteiten bloot te leggen en kunnen nieuwe doelen opleveren voor de behandeling van ziekten. Daarom zijn serine- en threonine-PTM's van onmisbaar belang in zowel fundamenteel biologisch onderzoek als klinische toepassingen.

Chomix beschikt over geavanceerde massaspectrometrietechnologie die in staat is om verschillende soorten post-translationele modificaties van eiwitten en hun specifieke locaties direct en nauwkeurig te analyseren. Door op een slimme manier scheidingsverrijkingstechnieken en isotopenlabeling te combineren, kunnen grootschalige, high-throughput kwalitatieve en kwantitatieve analyses van verschillende modificaties worden bereikt, wat robuuste technische ondersteuning biedt voor diepgaand onderzoek naar post-translationele modificaties van eiwitten.

Technisch Platform (O-glycosylatie)

O-gekoppelde glycosylering is een biochemisch proces dat suikerketens overbrengt naar de zuurstofatomen van serine- en threonineresiduen in peptideketens. Met behulp van UDP-GalNAz- en Y289L GalT1-reagentia kunnen deze middelen suikermoleculen op glycosyleringsplaatsen labelen met een -N3-groep. Daaropvolgende stappen met betrekking tot klikchemie, enzymatische vertering, verrijking en massaspectrometrie met hoge resolutie maken de nauwkeurige identificatie van O-glycosyleringsplaatsen mogelijk, waardoor de cruciale rol van deze post-translationele modificatie in organismen wordt onthuld.

Onze voordelen

1. Professionele expertise: Met ruime ervaring en publicaties in toonaangevende tijdschriften bieden wij dienstverlening op maat voor optimaal resultaat.
2. Rigoureus kwaliteitsmanagement: onze volwassen kwaliteitssystemen voldoen aan de ISO9001-normen en garanderen betrouwbare rapporten.
3. Uitgebreide service: van sondeontwerp tot bio-informatica-analyse, wij bieden alles-in-één advies tot levering, met tijdige voortgangsupdates.
4. Geavanceerde apparatuur: Uitgerust met geavanceerde massaspectrometers zoals Thermo Fisher Orbitrap Exploris 480 en Bruker timsTOF ondersteunen we baanbrekend onderzoek.

Onze service

Project	Post-translationele modificaties van serine/threonine op basis van massaspectrometrie met hoge resolutie
Steekproef	Lysaat, levende cellen, weefselmonsters
Hardwareplatform	VanquishNeo UPLC gekoppeld aan Orbitrap Exploris 480 massaspectrometer (Thermo Fisher Scientific); EASY-nLC1200 UPLC gekoppeld aan Q Exactive HF-X massaspectrometer (Thermo Fisher Scientific)
Projectduur	4-8 weken
Leveringen	Projectrapport (inclusief gelafbeeldingen, site-informatie, enz.)
Prijs	Klik om te raadplegen

Casestudy

Projectdoelstelling: Het doel van dit project is het uitvoeren van diepgaande chemische proteomische analyses van post-translationele modificatie van O-GlcNAcylering met behulp van massaspectrometrietechnologie.
Oplossing: We gebruiken een gecombineerde aanpak van metabolische labeling en massaspectrometrie om nauwkeurige en uitgebreide kwalitatieve analyses van O-glycosylatieplaatsen uit te voeren. In het experimentele proces bepalen we eerst de hoeveelheid Y289L GalT1-enzym met behulp van fluorescentiegeltechnologie, gevolgd door massaspectrometrische analyse onder strikt gedefinieerde experimentele omstandigheden. Door middel van twee ronden van herhaalde experimenten werden in totaal 36 betrouwbare glycosyleringsplaatsen geïdentificeerd. Er wordt een voorbeeld gepresenteerd van een typisch MS2-spectrum.